Характеристика показників контролю якості реакції нейтралізації вірусу в культурі клітин для виявлення антитіл до вірусу сказу (FAVN-тест)
DOI:
https://doi.org/10.31073/onehealthjournal2026-I-03Ключові слова:
вірус сказу, референс-штам, сироватка крові, антитіла, вірусна нейтралізаціяАнотація
У статті представлена інформація щодо результатів постійного контролю за показниками титрів вірусу сказу та стандартної сироватки в FAVN-тесті, що є запорукою якості і достовірності результатів дослідження сироваток крові на наявність антитіл до вірусу сказу. FAVN-тест є основним методом оцінки імунної відповіді на введення антирабічної вакцини, що рекомендується до використання ВООЗ і ВООЗТ. Дослідження напруженості індивідуального поствакцинального антирабічного імунітету є вимогою країн Європейського Союзу та багатьох інших країн світу та України під час некомерційного переміщення тварин-компаньйонів. В Україні вперше впроваджено метод FAVN-тест в науково-дослідному вірусологічному відділі ДНДІЛДВСЕ. Для забезпечення якості досліджень розроблено форми і впроваджено картки контролю. Вносяться отримані в кожній постановці реакції значення log50 позитивної стандартної сироватки ВООЗТ (0,5 МО/см3), значення log50 негативної сироватки та значення log50 титру вірусу сказу штаму CVS-11. Протягом 2019–2024 рр. проведено постановку 929 реакцій методом FAVN-тест, в яких досліджено та обраховано усі визначені показники та побудовані відповідні графіки. Постійний контроль визначених показників дав змогу здійснювати коригувальні дії при зміні серії вірусу сказу або оновленні лінії культури клітин. У 2025 році прийнято участь в міжлабораторному раунді (Rabies serology proficiency test). Проведені дослідження отриманої закодованої панелі сироваток крові показали значення коефіцієнта детермінації «R2»=0,9879. Отримані нами результати свідчать про їх високу (≥0,95) ступінь відповідності очікуваним результатам.Посилання
World Health Organization (2018). WHO Expert Consultation on Rabies. Third report. World Health Organization technical report series 1012. Geneva, Switzerland.
Rupprecht C.E., Fooks A.R., Abela-Ridder B., World Health Organization. (2019). Laboratory techniques in rabies, Volume 2. World Health Organization: Geneva, Switzerland.
Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Chapter 3.1.18. Rabies (infection with rabies virus and other lyssaviruses). (2023). Taken from https://www.woah.org/en/what-we-do/standards/codes-and-manuals/terrestrial-manual-online-access/
Regulation (EU) No 576/2013 of the European Parliament and of the Council of 12 June 2013 on the non-commercial movement of pet animals and repealing Regulation (EC) No 998/2003 Text with EEA relevance. (2013). https://eur-lex.europa.eu/eli/reg/2013/576/oj
Polupan I.M., Nedosekov V.V., Rudoi O.V. (2021). Laboratory diagnosis of rabies; DNDILDVSE.
Cliquet F., Aubert M., Sagné L. (1998). Development of a fluorescent antibody virus neutralisation test (FAVN test) for the quantitation of rabies-neutralising antibody. Journal of immunological methods; 212(1):79–87. DOI: https://doi.org/10.1016/s0022-1759(97)00212-3
Hostnik P. (2000). The modification of fluorescent antibody virus neutralization (FAVN) test for the detection of antibodies to rabies virus. Journal of veterinary medicine. B, Infectious diseases and veterinary public health; 47(6):423–427. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1439-0450.2000.00362.x
Polupan I.M. (2011). Estimation of different storage methods of rabies virus vaccine strains. Veterinary Biotechnology; 20, 127-133.
Corey L., Hattwick M.A., Baer G.M., Smith J.S. (1976). Serum neutralizing antibody after rabies postexposure prophylaxis. Annals of internal medicine; 85(2):170–176. DOI: https://doi.org/10.7326/0003-4819-85-2-170
Shiraishi R., Nishimura M., Nakashima R., Enta C., Hirayama N. (2014). Neutralizing antibody response in dogs and cats inoculated with commercial inactivated rabies vaccines. The Journal of veterinary medical science; 76(4):605–609. DOI: https://doi.org/10.1292/jvms.13-0335
Haase M., Seinsche D., Schneider W. (1985). The mouse neutralization test in comparison with the rapid fluorescent focus inhibition test: differences in the results in rabies antibody determinations. Journal of biological standardization; 13(2):123–128. DOI: https://doi.org/10.1016/s0092-1157(85)80017-2
Kostense S., Moore S., Companjen A., Bakker A.B., Marissen W.E., von Eyben R., Weverling G.J., Hanlon C., Goudsmit J. (2012). Validation of the rapid fluorescent focus inhibition test for rabies virus-neutralizing antibodies in clinical samples. Antimicrobial agents and chemotherapy; 56(7):3524–3530. DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.06179-11
Wasniewski M., Barrat J., Fooks A.R., Franka R., Müller T., Sabeta C., Cliquet F. (2017). Production and calibration of the second batch of OIE anti-rabies positive reference serum. Revue scientifique et technique (International Office of Epizootics); 36(3):779–788. DOI: https://doi.org/10.20506/rst.36.3.2713
Wasniewski M., Laurentie M., Rizzo F., Servat A., Aubert M., & Cliquet F. (2019). Proficiency test for rabies serology: A design complying with international standards for a reliable assessment of participating laboratories. PLoS neglected tropical diseases; 13(12):e0007824. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007824
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2026 Журнал One Health Journal
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
