Experience in controlling classical swine fever using booster vaccination

М.П. Ситюк; А.Ф. Ображей; І.В. Галка; А.П. Герілович

doi:10.31073/onehealthjournal2025-V-08

Автор(и)

М.П. Ситюк Інститут ветеринарної медицини НААН, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0002-7492-9256
А.Ф. Ображей Національна академія аграрних наук України, Київ, Україна
І.В. Галка Державний науково-дослідний інститут лабораторної діагностики та ветеринарної і санітарної експертизи, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0001-8701-3506
А.П. Герілович Науково-дослідний інститут єдиного здоров'я, ПНУ, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-3280-4172

DOI:

https://doi.org/10.31073/onehealthjournal2025-V-08

Ключові слова:

класична чума свиней, розслідування випадків, діагностика, вакцини

Анотація

У статті представлено експериментальні наукові дані епізоотологічного дослідження випадку класичної чуми свиней (КЧС) серед домашніх свиней у приватному секторі та застосування бустерних доз вакцин проти КЧС на поросят-вірусоносіях. Метою роботи було проведення епідеміологічного дослідження захворюваності на КЧС серед домашніх свиней у приватному секторі. Підтвердити ефективність бустерних (десятикратних) доз вакцин ASV та LK-M проти класичної чуми свиней за допомогою клінічних, патологоанатомічних, анатомічних та лабораторних методів діагностики захворювання на КЧС та оцінки ефективності захворювання на КЧС у поросят.
Експерименти проводилися в камері КЧС у селі Хотів Києво-Святошинського району міста Києва, де утримувалося 20 голів невакцинованих поросят до двомісячного віку вагою 10-12 кг, 1 порося віком 7-8 місяців, 1 кнур та 1 свиноматка віком 1,5 року. Для діагностичної мети випадку класичної чуми свиней, відповідно до загальноприйнятих методів, було використано гематологічний метод з підрахунком кількості лейкоцитів крові та імунопероксидазний тест для виявлення антигенів та антитіл до вірусу чуми свиней. Поросят вакцинували сухою лапінізованою вірусною вакциною ASV, а тварин другої групи – вірусною вакциною LK-M.
На основі проведених досліджень можна стверджувати, що у спалаху класичної чуми свиней більш ефективною була вірусна вакцина LK-M, яка, на відміну від ASV, здатна зупинити інфекційний процес. На нашу думку, це явище пов'язане з тим, що живий атенуйований вірус вакцини проти класичної чуми свиней у кількості 100 000 ImD50 (десятикратна доза вакцинації вакциною LK-M) ймовірно перевищував кількість польового вірусу в організмі поросят і сприяє більш вираженій реакції імунної системи організму (утворенню специфічних антитіл) та подальшій нейтралізації польового вірусу та одужанню тварин, тоді як у вакцині проти класичної чуми свиней кількість живого атенуйованого вірусу навіть у десятикратній дозі була недостатньою для зупинки розвитку інфекції класичної чуми свиней.
Аналіз епізоотичного розслідування випадку класичної чуми свиней у приватному секторі показав, що збудник був занесений з харчовими відходами, принесеними з закладів харчування, які не пройшли термічну обробку перед годуванням.
В умовах спалаху класичної чуми свиней вакцина проти вірусу ЛK-M виявилася більш ефективною, здатною зупинити інфекційний процес. через наявність великої кількості живого атенуйованого вакцинного вірусу в десятикратній дозі, що перевищувало кількість польового вірусу в організмі поросят та сприяло більш вираженій імунологічній реакції з боку організму поросят та подальшій нейтралізації польового вірусу та їх одужанню порівняно з вакциною АСВ.
На нашу думку, у певних випадках (наприклад, збереження порід або племінне розведення свиней) одним із перспективних заходів у разі виникнення та ліквідації спалаху КЧС є застосування десятикратних доз вакцини ЛK-M з дозволу Державної ветеринарної служби України.

Посилання

Terpstra C., Wensvoort, G. (1988). The protective value of vaccine-induced neutralizing antibody titres in swine fever. Veterinary Microbiology, 16(2), 123–128. https://doi.org/10.1016/0378-1135(88)90036-3

Postel A., Austermann-Busch S., Petrov A., Moennig V., Becher, P. (2018). Epidemiology, diagnosis and control of classical swine fever: Recent developments and future challenges. Transboundary and Emerging Diseases, 65(Suppl 1), 248–261. https://doi.org/10.1111/tbed.12676

Luo Y., Li S., Sun Y., Qiu H.-J. (2014). Classical swine fever in China: A minireview. Veterinary Microbiology, 172(1), 1–6. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2014.04.004

Rossi S., Staubach C., Blome S., Guberti V., Thulke H.-H., Vos A., Koenen F., Le Potier M. F. (2015). Controlling CSFV in European wild boar using oral vaccination: A review. Frontiers in Microbiology, 6, 1141. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01141

Blome S., Staubach C., Henke J., Carlson J., Beer, M. (2017). Classical swine fever—An updated review. Viruses, 9(4), 86. https://doi.org/10.3390/v9040086

Jenckel M., Blome S., Beer M., Hoper D. (2017). Quasispecies composition and diversity do not reveal any predictors for chronic classical swine fever virus infection. Archives of Virology, 162(3), 775–786. https://doi.org/10.1007/s00705-016-3161-8

Shykov O. T., Sytiuk M. P., Bilokon V. I., Panchenko O. O., Sobko Yu. A., Obrazhei A. F. (2002). Kompleksne vyvchennia protychumnoi vaktsyny "LK-M" [Comprehensive study of the anti-plague vaccine "LK-M"]. Veterynarna biotekhnolohiia [Veterinary Biotechnology], 2, 263–268. [in Ukrainian]

Saunders G. C. (1977). Development and evaluation of an enzyme-labeled antibody test for the rapid detection of hog cholera antibodies. American Journal of Veterinary Research, 38(1), 21–25. https://doi.org/10.2460/ajvr.1977.38.01.21

Xia H., Harimoorthy R., Vijayaraghavan B., Blome S., Widen F., Beer M., Belak S., Liu L. (2015). Differentiation of Classical Swine Fever Virus Infection from CP7_E2alf marker vaccination by a multiplex microsphere immunoassay. Clinical and Vaccine Immunology, 22(1), 65–71. https://doi.org/10.1128/CVI.00271-14

Meyer D., Fritsche S., Luo Y., Engemann C., Blome S., Beyerbach M., Chang C. Y., Qiu H. J., Becher P., Postel A. (2017). The double-antigen ELISA concept for early detection of Erns-specific classical swine fever virus antibodies and application as an accompanying test for differentiation of infected from marker-vaccinated animals. Transboundary and Emerging Diseases, 64(6), 2013–2022. https://doi.org/10.1111/tbed.12611

Liu S. T., Li S. N., Wang D. C., Chang S. F., Chiang S. C., Ho W. C., Chang Y. S., Lai S. S. (1991). Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods, 35(2), 227–236. https://doi.org/10.1016/0166-0934(91)90138-P

Kit M., Gerilovych A. (2021). Development of DNA detection of African swine fever virus by loop-mediated isothermal amplification. In Proceedings of the 2021 International BioThreat Reduction Symposium: Abstract Book (Vol. 2, p. 63). https://www.researchgate.net/profile/Astghik-Pepoyan/publication/.

Sytiuk M. P., Shykov, O. T. (2002). Vyvchennia pokaznykiv kilkosti leikotsytiv krovi u pidsvynkiv, shcheplenykh proty klasychnoi chumy svynei lapinizovanoiu viralvaktsynoiu ASV [Study of blood leukocyte counts in piglets vaccinated against classical swine fever with the lapinized ASV vaccine]. Scientific Visnyk LDAVM imeni S.Z. Gzhytskoho – Scientific Messenger of Gzhytskyi LDAVM, 4(1), 144–147. [in Ukrainian]

Dales S. (1973). Early events in cell-animal virus interactions. Bacteriological Reviews, 37(2), 103–135. https://doi.org/10.1128/br.37.2.103-135.1973

Sobko Yu. A. (1999). Specific prevention of classical swine fever. Veterynarna medytsyna Ukrainy [Veterinary Medicine of Ukraine], 7, 20–21. [in Ukrainian]

Pryskoka V. A., Pavlenko M. S. (1995). Diagnostics and immunoprofilaktyka klasychnoi chumy svynei [Diagnostics and immunoprophylaxis of classical swine fever] (p. 40). Kyiv. [in Ukrainian]

Kolomyitsev A. A., Zhesterev V. I., Vishniakov I. F. (1995). Epizootiia klassicheskoi chumy svinei na svinokomplekse "Industrialnyi" Krasnodarskogo kraia i rol virusvaktsiny iz shtamma LK-K v eio lokalizatsii [Epizootic of classical swine fever at the Industrial pig farm in Krasnodar Krai and the role of the LK-K strain vaccine in its localization]. In Classical swine fever – urgent problems of science and practice (pp. 41–42). Pokrov. [in Russian]

Makarov V. V., Dzhupina S. I., Kolomytsev, A. A. (2001). Klassicheskaia chuma svinei – osobennosti epizooticheskogo protsessa i problemy na sovremennom etapie [Classical swine fever: Features of the epizootic process and problems at the present stage]. Agrarnaia Rossiia [Agrarian Russia], 3, 42–48. [in Russian]

Pryskoka V. A., Sobko Yu. A., Aranchii S. V. (2000). Klasychna chuma svynei (problemy ta perspektyvy) [Classical swine fever: Problems and prospects] (p. 180). Kyiv. [in Ukrainian]

World Organization for Animal Health (OIE). (2017). World Animal Health Information Database (WAHIS) Interface. http://www.oie.int/wahis_2/public/wahid.php/Diseasecontrol/ measures

Liess B. (1987). Pathogenesis and epidemiology of hog cholera. Annales de Recherches Veterinaires, 18(2), 139–145. PMID: 3304111

Sobko Yu. A., Verhun L. Yu., Bilokon V. I., Temnikhanov Yu. D., Pryskoka V. A. (1998). Metodychni rekomendatsii po vyiavlenniu virusu klasychnoi chumy svynei ta vyznachenniu yoho infektsiinoi aktyvnosti v kulturi klityn immunoperoksydaznym metodom [Methodological recommendations for detection of classical swine fever virus and determination of its infectious activity in cell culture by the immunoperoxidase method]. Kyiv. [in Ukrainian]

Chistiakov I. A. (1966). Statisticheskie metody v virusologicheskikh issledovaniiakh [Statistical methods in virological studies]. In V. N. Syurin (Ed.), Rukovodstvo po veterinarnoy virologii [Handbook of veterinary virology] (pp. 390–407). Moscow. [in Russian]