Комплексна оцінка стану сирого коров'ячого молока за вмістом соматичних клітин і мезофільних аеробних та факультативно-анаеробних мікроорганізмів як індикаторів безпечності та технологічних властивостей молочної сировини
DOI:
https://doi.org/10.31073/onehealthjournal2026-III-04Ключові слова:
соматичні клітини, мезофільних аеробних і факультативно-анаеробних мікроорганізмів (МАФАнМ), молоко коров'яче, ґатунок, автоматизований метод TEMPO®, кореляційний аналіз, t-критерій СтьюдентаАнотація
У роботі проведено порівняльну оцінку методів визначення вмісту соматичних клітин та кількості мезофільних аеробних і факультативно-анаеробних мікроорганізмів (МАФАнМ) у сирому коров'ячому молоці. Метою дослідження було встановлення аналітичної узгодженості, точності та відтворюваності результатів, отриманих різними методами, а також обґрунтування можливості застосування автоматизованої системи TEMPO® як альтернативного методу мікробіологічного контролю.
Матеріалом дослідження слугували 39 зразків нативного коров'ячого молока, відібраних у 2025 році від клінічно здорових корів чорно-рябої та червоної молочних порід віком 4–8 років у приватних господарствах різних регіонів України. Визначення кількості соматичних клітин здійснювали двома мікроскопічними методами відповідно до вимог ISO 13366-1:2008: шляхом підрахунку клітин у мазках у п'ятдесяти полях зору та у десяти паралельних смугах. Кількість МАФАнМ визначали двома незалежними методами: автоматизованим флуориметричним методом із використанням системи TEMPO® та еталонним методом глибинного посіву на поживне середовище Plate Count Agar згідно з ISO 4833-1:2013.
Статистичну обробку результатів здійснювали із застосуванням парного t-критерію Стьюдента та кореляційного аналізу Пірсона. Встановлено, що середні значення показників соматичних клітин, отримані різними методами, становили 301795 та 294641 клітин/см³ відповідно, а для МАФАнМ — 43041 та 43513 КУО/см³. Розраховані значення t-критерію (t = 1,80 для соматичних клітин та t = –1,32 для МАФАнМ) не перевищували критичних значень (p > 0,05), що свідчить про відсутність статистично значущих відмінностей між методами. Коефіцієнт кореляції Пірсона становив r = 1,0 для соматичних клітин та r = 0,9996 для МАФАнМ (p < 0,05), що вказує на наявність тісного прямого лінійного зв'язку та високу узгодженість результатів.
Дослідження показали, що автоматизована система TEMPO® забезпечує результати визначення мезофільних аеробних та факультативно-анаеробних мікроорганізмів (МАФАнМ) у сирому молоці, статистично еквівалентні еталонному методу, з високою точністю та відтворюваністю і мінімальним впливом людського фактору. Використання цієї системи доцільне для впровадження у виробничих лабораторіях як оперативного та надійного інструменту контролю мікробіологічних показників молочної сировини.
Посилання
Ryzhkova T. (2023). Comparative evaluation of methods for determining the number of mesophilic aerobic and facultative anaerobic microorganisms and coliforms in cow and goat milk and brined cheese. Agrarian Bulletin of the Black Sea Region; 107, 96–104. doi.: 10.37000/abbsl.2023.107.17
Fonseca M., Kurban D., Roy J. P., Santschi D. E., Molgat E., Dufour S. (2025). Usefulness of differential somatic cell count for udder health monitoring: Association of differential somatic cell count and somatic cell score with quarter-level milk yield and milk components. Journal of Dairy Science; 108(4), 3003–3016. doi.: 10.3168/jds.2024-25402
Desidera F., Skeie S. B., Devold T. G., Inglingstad R. A., Porcellato D. (2025). Fluctuations in somatic cell count and their impact on individual goat milk quality throughout lactation. Journal of Dairy Science; 108, 2291–2304. doi.: 10.3168/jds.2024-25310
Nagy S. A., Csabai I., Varga T., Poth-Szebenyi B., Gabor G., Solymosi N. (2025). Neural network-aided milk somatic cell count increase prediction. Veterinary Sciences; 12(5), 420. doi.: 10.3390/vetsci12050420
Besteiro R., Fouz R., Dieguez F. J. (2025). Influence of heat stress on milk production, milk quality, and somatic cell count in Galicia (NW Spain). Animals; 15(7), 945. doi.: 10.3390/ani15070945
Smistad M., Inglingstad R. A., Vatne M. K., Franklin F. V., Hansen B. G., Skeie S., Porcellato D. (2025). Somatic cell count in dairy goats II: Udder health monitoring at goat and herd level. BMC Veterinary Research; 21(1), 157. doi.: 10.1186/s12917-025-04556-8
Ermetin O., Okuyucu I. C., Kul E. (2025). Effect of somatic cell count on fertility and milk yield traits during different lactation periods in Holstein cows. Turkish Journal of Agriculture: Food Science and Technology; 13(5), 1285–1291. doi.: 10.24925/turjaf.v13i5.1285-1291.7633
Fonseca M., Kurban D., Roy J. P., Santschi D. E., Molgat E., Yang D. A., Dufour S. (2025). Usefulness of differential somatic cell count for udder health monitoring: Identifying referential values for differential somatic cell count in healthy quarters and quarters with subclinical mastitis. Journal of Dairy Science; 108(4), 3917–3928. doi.: 10.3168/jds.2024-25403
Pan L., Chen X., Han D., Li N., Chen D., Wang J., Huo X. (2025). Machine learning-based clinical mastitis detection in dairy cows using milk electrical conductivity and somatic cell count. Frontiers in Veterinary Science; 12, 1671186. doi.: 10.3389/fvets.2025.1671186
Mikulec N., Spoljaric J., Plavljanic D., Lovric N., Ostaric F., Gajdos J., Kljusuric K., Sarim M., Zdolec N., Kazazic S. (2024). MALDI-TOF mass spectrometry-based identification of aerobic mesophilic bacteria in raw unpreserved and preserved milk. Processes; 12(4), 731. doi.: 10.3390/pr12040731
Miftari H., Nikolovska Nedelkoska D., Rampanti G., Harasym J., Ferrocino I., Ferati I., Cardinali F., Orkusz A., Milanovic V., Franciosa I., Garofalo C., Aquilanti L., Osimani A. (2026). A taste of North Macedonia: Seasonal variation in the microbiota, physico-chemical traits, and morpho-textural profile of a traditional brined raw goat's milk cheese. Food Research International; 231, 118806. doi.: 10.1016/j.foodres.2026.118806
Sadvari V. Y., Shevchenko L. V., Slobodyanyuk N. M., Tupitska O. M., Gruntkovskyi M. S., Furman S. V. (2024). Microbiome of craft hard cheeses from raw goat milk during ripening. Regulatory Mechanisms in Biosystems; 15(3), 483–489. doi.: 10.15421/022468
Zhao X., Zheng N., Zhang Y., Wang J. (2025). The role of milk urea nitrogen in nutritional assessment and its relationship with dairy cow phenotypes: A review. Animal Nutrition; 20, 33–41. doi.: 10.1016/j.aninu.2024.08.007
Vranje P., Popovic M., Jevtic M. (2015). Raw milk consumption and health. Srpski Arhiv za Celokupno Lekarstvo; 143(1–2), 87–92. doi.: 10.2298/SARH1502087P
Li Y., Jia H., Zheng Y., Sun X., Zhang Y., Liu W., Zhang W., Jiang Y., Zhao Q., Guo L. (2025). The nutritional composition and multi-omics analysis of raw milk from Normande and Holstein cows. Food Frontiers; 6(6), 3042–3058. doi.: 10.1002/fft2.70115
Yang Y., Wu X., Xu Y., Shuang Q., Xia Y. N. (2025). Influence of feeding systems on the microbial community and flavor characteristics of raw milk: A comparative analysis. Journal of Dairy Science; 108(5), 4693–4708. doi.: 10.3168/jds.2024-25959
Mykhailiutenko S. M., Kuzmenko L. M., Gutyj B. V., Mykhailiutenko Y. E. (2025). Seasonal fluctuations in individual milk parameters in free-range cows. Ukrainian Journal of Veterinary and Agricultural Sciences; 8(1), 85–89. doi.: 10.32718/ujvas8-1.12
Kotelevich V., Guralska S., Honcharenko V. (2023). Actual problems of the quality and safety of milk and dairy products. Naukovyi Visnyk Veterynarnoi Medytsyny; 1(180), 24–39. doi.: 10.33245/2310-4902-2023-180-1-24-39
Nuzzi C., Pasinetti S., Bassi I., Bello V. (2026). On the applicability of speckle pattern imaging combined with AI for raw milk classification. Measurement; 258, 119246. doi.: 10.1016/j.measurement.2025.119246
Curci D., Sundaram T. S., Ghidini S., Arioli F. (2025). What we know about per- and polyfluoroalkyl contamination levels in milk: A review from the last decade. Foods; 14(13), 2274. doi.: 10.3390/foods14132274
Kukeyeva A., Abdrakhmanov T., Yeszhanova G., Bakisheva Z., Kemeshov Z. (2023). The use of a homeopathic preparation in the treatment of subclinical mastitis in cows. Open Veterinary Journal; 13(8), 991–1002. doi.: 10.5455/OVJ.2023.v13.i8.5
Micules N., Spoljaric J., Plavljanic D., Darrer M., Ostaric F., Kljusuris J., Sarin K., Zdolec N., Kazazic S. (2025). Microbiota composition in raw drinking milk from vending machines: A case study in Croatia. Fermentation; 11(2), 55. doi.: 10.3390/fermentation11020055
Yuan H., Han S., Zhang S., Xue Y., Zhang Y., Lu H., Wang S. (2022). Microbial properties of raw milk throughout the year and their relationships to quality parameters. Foods; 11(19), 3077. doi.: 10.3390/foods11193077
International Organization for Standardization. (2008). Milk—Enumeration of somatic cells—Part 1: Microscopic method (Reference method) (ISO 13366-1:2008 | IDF 148-1:2008). https://www.iso.org/standard/40259.html
International Organization for Standardization. (2013). Microbiology of the food chain—Horizontal method for the enumeration of microorganisms—Part 1: Colony count at 30 °C by the pour plate technique (ISO 4833-1:2013). https://www.iso.org/standard/53728.html
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2026 журнал "One Health Journal"
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
